Bu deneysel çalışma Fırat Üniversitesi Deney Hayvanları Laboratuvarı'nda yapıldı. 21 adet düzenli siklusa sahip, 200±40 gram ağırlığında, 14 haftalık, erişkin dişi Wistar Albino cinsi rat 12 saat ışık (08- 20), 12 saat karanlık fotoperyodunda ve 21- 23 C° sabit sıcaklıktaki odada, standart pellet yemi ve şehir suyu ile beslendi. Bu çalışma için Fırat Üniversitesi Tıp Fakültesi Etik Komitesi’nden izin alındı. Ratlara anestezi sağlamak amacıyla Ketamine (Ketalar, Eczacıbaşı Warner- Lambert, İstanbul, Turkey) 60 mg/kg ve Xylazine ( Rompun, Bayer, İstanbul, Turkey) 7 mg / kg sol arka ayak adalesine intramusküler yolla uygulanarak anestezi sağlandı. Ratlar sırt üstü pozisyonda operasyon masasına yatırıldı, cerrahi alan %10’luk povidone iodine solüsyonu ile yıkanarak antisepsi sağlandı ve batın orta hat insizyonla açıldı.
Ratlar rastgele, prospektif 3 gruba ayrıldı.
Grup 1 (n =7): Sadece batın açılıp kapatılan grup
(sham grubu),
Grup 2 (n =7): Adezyon grubu, sağ uterin horna 2 cm lineer kesi yapılıp 4/0 vicryl ile kapatılan grup,
Grup 3 (n =7): Operasyondan bir gün önce 50 mg/kg dozunda gavaj ile oral vitamin C uygulanan ve sağ uterin horna 2 cm lineer kesi yapılıp 4/0 vicryl ile kapatılan grup 12.
Adezyon oluşturmak için tüm ratlara sağ uterin hornda antimezenterik yüzeyde, orta hatta bistürü ile 2 cm’lik uzunlamasına insizyon yapıldı. Bu insizyon 4/0 vicryl ile kapatıldı.
Batın tabakaları 3/0 ipek ile kontünü kapatıldı. Tüm ratların 15 gün sonra vertikal insizyonla batını açıldı. Abdominal kavite gözlendi.
Linsky ve ark’nın 13 önerdiği şekilde, yazarlardan birisi tarafından kör olarak adezyon
skorlaması yapıldı. Linsky skorlaması:
Adezyon boyutu
Adezyon yok=0 puan,
travmatize alanın %25’inde var=1 puan,
travmatize alanın %25-50’sinde var=2 puan,
travmatize alanın %50-%100’ünde var=3 puan.
Adezyon şiddeti:
Ayırma işlemine herhangi bir direnç yok=0 puan,
orta derecede güç gerekli =0,5 puan,
keskin diseksiyon gerekli=1 puan.
Histolojik İnceleme: Travmatize edilen uterin horn bölgesi adezyon oluşan kısımları da içerecek şekilde hızla çıkarılıp %10 formaldehitle tespit edildi. Rutin ışık mikroskobu takibi yapılarak dokular parafin bloklara gömüldü. Parafin bloklardan 5–6 µm kalınlığında alınan kesitlere Masson’s trikrom boyası yapıldı. Histopatolojik adezyon değerlendirilmesinde Hooker ve ark’nın 14 tanımladığı semikantitatif skorlama sistemi kullanıldı. Histopatolojik adezyon; fibrozisin varlığı ve yaygınlığına göre kategorize edildi. grade 0= fibrozis yok, grade I= hafif fibrozis, grade II= orta derecede fibrozis ve grade III= şiddetli fibrozis.
İmmünohistokimyasal inceleme: Parafin bloklardan 5–6 µm kalınlığında alınan kesitler polilizinli lamlara alındı. Deparafinize edilen dokular dereceli alkol serilerinden geçirilip antigen retrieval için sitrat tampon solüsyonunda pH:6’da mikrodalga fırında (750W) 7+5 dakika kaynatıldı. Kaynatma sonrası oda ısısında yaklaşık 20 dakika soğutmak için bekletilen dokular PBS (Phosphate Buffered Saline, P4417, Sigma-Aldrich, USA) ile 3x5 dakika yıkandıktan sonra endojen peroksidaz aktivitesini önlemek için hidrojen peroksid blok solusyonu ile 5 dakika inkübe edildi (Hydrogen Peroxide Block, TA-125-HP, Lab Vision Corporation, USA). PBS ile 3x5 dakika yıkanana dokulara zemin boyasını engellemek için 5 dakika Ultra V Block (TA–125-UB, Lab Vision Corporation, USA) solüsyonu uygulandıktan sonra 1/200 oranında dilue edilen primer antikorlar (Rabbit polyclonal VEGF (vascular endothelial growth factor), E2611, Spring Bioscience, USA), (Rabbit polyclonal Anti-Malondialdehyde antibody, (ab6463), Abcam, Cambridge, UK) and (Collagen Type I mouse monoclonal IgG, Santa Cruz Biotechnology, sc–59772, California, USA) ile 60 dakika nemli ortamda oda ısısında inkübe edildi. Dokular, primer antikor uygulanmasından sonra PBS ile 3x5 dakika yıkandıktan sonra sekonder antikor (biotinylated Goat Anti-Poliyvalent (anti-mouse / rabbit IgG), TP–125-BN, Lab Vision Corporation, USA) ile 30 dakika nemli ortamda oda ısısında inkübe edildi. Dokular, Sekonder antikor uygulanmasından sonra PBS ile 3x5 dakika yıkanıp Streptavidin Peroxidase (TS–125-HR, Lab Vision Corporation, USA) ile 30 dakika nemli ortamda oda ısısında inkübe edildikten sonra PBS içerisine alındı. Dokulara 3-amino-9-ethylcarbazole (AEC) Substrate + AEC Chromogen (AEC Substrate, TA-015 ve HAS, AEC Chromogen, TA-002-HAC, Lab Vision Corporation, USA) solusyonu damlatılıp ışık mikroskobunda görüntü sinyali alındıktan sonra eş zamanlı olarak PBS ile yıkamaya alındı. Mayer’s hematoksilen ile zıt boyaması yapılan dokular PBS ve distile sudan geçirilerek uygun kapatma solusyonu (Large Volume Vision Mount, TA-125-UG, Lab Vision Corporation, USA) ile kapatıldı. Hazırlanan preparatlar Olympus BX 50 mikroskobunda incelenerek değerlendirildi ve fotoğraflandı.
İmmünohistokimyasal boyanmanın değerlendirilmesinde Goldman ve ark’ nın 15 tanımladığı semikantitatif skorlama sistemi kullanıldı. Sitoplazmik immün boyanmanın şiddeti ve yaygınlığı 0’dan +4’e kadar sayı ile semikantitatif olarak skorlandı (0= boyanma yok; 1= şüpheli; 2= hafif; 3= orta; 4= kuvvetli pozitif).
İstatistiksel analiz: Çalışmada kullanılacak değişkenlerden standart sapması en geniş olan değişken için %80 güç ve 0.05 anlamlılık seviyesinde bir güç analizi gerçekleştirildiğinde her bir grupta en az 5 optimal olarak da 7 denek olması gerektiği hesaplanmıştır. Verilerin istatistiksel analizi için SPSS 21.0 programı kullanıldı. Önce Kruskall Wallis varyans analizi yapıldı. Veriler medyan (minimum ve maksimum) olarak ifade edildi, p <0.05 bulunan parametreler için gruplar arası ikili karşılaştırmalar da Mann Whitney U testi kullanıldı. Önemlilik enflasyonunu önlemek için Bonferroni düzeltmesi yapılarak p <0.01 anlamlı kabul edildi.